ORCA-Flash4.0 V3 デジタルCMOSカメラ C13440-20CU

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ORCA-Flash4.0 V3は、科学計測用CMOSイメージセンサを搭載したCMOSカメラです。高解像度、高感度に加え、豊富な機能を搭載しています。

ORCAは、浜松ホトニクス株式会社の登録商標です。

カタログ（ライフサイエンス用） 1.7 MB/PDF

カタログ 971 KB/PDF

特長
機能
ライトシート読み出しモード【特許登録済み】
動画ギャラリー
参考文献
ソフトウエア
仕様
分光感度特性
外形寸法図

特長

量子効率82 ％（Peak QE）
低ノイズ
- 0.8 electrons （スロースキャンモード30 フレーム/ 秒）
- 1.0 electrons （スタンダードスキャンモード100 フレーム/ 秒）
高速読み出し
- 100 フレーム/ 秒（Camera Link）
- 80 フレーム/ 秒（USB3.0 /8 bit）★新機能
- 53 フレーム/ 秒（USB3.0/12 bit）★新機能
高解像度
- 400万画素

機能

ライトシート読み出しモード
W-VIEWモード
デュアルライトシート読み出しモード

ライトシート読み出しモード【特許登録済み】

ライトシート読み出しモードは、ライトシート顕微鏡画像のS/Nを改善するsCMOSカメラの読み出し方法です。

ライトシート読み出しモードの原理や特長について詳しくはこちらをご覧ください。

ライトシート読み出しモードとは

動画ギャラリー

ライトシート顕微鏡への応用

GFP蛍光リアルタイム血流観察

超高速（400 fps）微分干渉観察

心筋細胞塊の拍動に伴う膜電位変化観察

超解像顕微鏡への応用

実体顕微鏡での高速高解像度撮影

花粉の共焦点断層画像

TIRF顕微鏡による糸状仮足の伸長観察

共焦点高速カルシウムイメージング観察

顕微鏡による細胞内微小管の伸長観察

薬理刺激によるPKCのトランスローケーション観察

心筋細胞塊の拍動に伴うカルシウムイメージング

参考文献

ORCA-Flash4.0

著者	タイトル	書名
Xuanze Chen, Zhiping Zeng, Rongqin Li, Boxin Xue, Peng Xi, Yujie Sun	Superior performance with sCMOS over EMCCD in super-resolution optical fluctuation imaging	Journal of Biomedical Optics
Luchang Li, Mengting Li, Zhaoning Zhang, Zhen-Li Huang	Assessing low-light cameras with photon transfer curve method	Journal of Innovative Optical Health Sciences
S Hayashi, Y Okada	Ultrafast superresolution fluorescence imaging with spinning disk confocal microscope optics	Molecular Biology of the Cell
Matthias Mehling, Tino Frank, Cem Albayrak, Sava? Tay	Real-time tracking, retrieval and gene expression analysis of migrating human T cells	Lab on a Chip
Ying S. Hu, Maxwell Zimmerley, Yu Li, Robin Watters, and Hu Cang	Single-Molecule Super-Resolution Light-Sheet Microscopy	ChemPhysChem
Peter W Winter and Hari Shroff	Faster fluorescence microscopy: advances in high speed biological imaging	Current Opinion in Chemical Biology
Ronny Forster, Hui-Wen Lu-Walther, Aurelie Jost, Martin Kielhorn, Kai Wicker, and Rainer Heintzmann	Simple structured illumination microscope setup with high acquisition speed by using a spatial light modulator	Optics express
Jeffrey P. Nguyen, Frederick B. Shipley, Ashley N. Linder, George S. Plummer, Joshua W. Shaevitz, and Andrew M. Leifer	Whole-brain calcium imaging with cellular resolution in freely behaving C. elegans	Neurons and Cognition
Zong W, Zhao J, Chen X, Lin Y, Ren H, Zhang Y, Fan M, Zhou Z, Cheng H, Sun Y, Chen L.	Large-field high-resolution two-photon digital scanned light-sheet microscopy	Cell Res. 2014 Sep 26. doi: 10.1038/cr.2014.124. [Epub ahead of print]
Vladimirov N, Mu Y, Kawashima T, Bennett DV, Yang CT, Looger LL, Keller PJ, Freeman J, Ahrens MB.	Light-sheet functional imaging in fictively behaving zebrafish	Nat Methods. 2014 Jul 27. doi: 10.1038/nmeth.3040. [Epub ahead of print]
Mickoleit M, Schmid B, Weber M, Fahrbach FO, Hombach S, Reischauer S, Huisken J.	High-resolution reconstruction of the beating zebrafish heart	Nat Methods. 2014 Jul 20. doi: 10.1038/nmeth.3037. [Epub ahead of print]
Vettenburg T, Dalgarno HI, Nylk J, Coll-Lladó C, Ferrier DE, Čižmár T, Gunn-Moore FJ, Dholakia K.	Light-sheet microscopy using an Airy beam	Nat Methods. 2014 May;11(5):541-4. doi: 10.1038/nmeth.2922. Epub 2014 Apr 6.
Juette MF, Terry DS1, Wasserman MR, Zhou Z, Altman RB, Zheng Q, Blanchard SC.	The bright future of single-molecule fluorescence imaging	Curr Opin Chem Biol. 2014 Jun 20;20C:103-111. doi: 10.1016/j.cbpa.2014.05.010.
Menon M, Askinazi OL, Schafer DA.	Dynamin2 organises lamellipodial actin networks to orchestrate lamellar actomyosin	PLoS One. 2014 Apr 7;9(4):e94330. doi: 10.1371/journal.pone.0094330. eCollection 2014.
Gualda EJ, Vale T, Almada P, Feijó JA, Martins GG, Moreno N.	OpenSpinMicroscopy: an open-source integrated microscopy platform	Nat Methods. 2013 Jul;10(7):599-600. doi: 10.1038/nmeth.2508. Epub 2013 Jun 9.
Fahrbach FO, Voigt FF, Schmid B, Helmchen F, Huisken J.	Rapid 3D light-sheet microscopy with a tunable lens	Opt Express. 2013 Sep 9;21(18):21010-26. doi: 10.1364/OE.21.021010.
Fullerton S, Bennett K, Toda E, Takahashi T.	Optimization of precision localization microscopy using CMOS camera technology	Proc. SPIE 8228, Single Molecule Spectroscopy and Superresolution Imaging V, 82280T (February 9, 2012); doi:10.1117/12.906336; http://dx.doi.org/10.1117/12.906336
Fullerton S, Bennett K, Toda E, Takahashi T.	Camera simulation engine enables efficient system optimization for super-resolution imaging	Proc. SPIE 8228, Single Molecule Spectroscopy and Superresolution Imaging V, 822811 (February 9, 2012); doi:10.1117/12.906346; http://dx.doi.org/10.1117/12.906346
Singh AP, Krieger JW, Buchholz J, Charbon E, Langowski J, Wohland T.	The performance of 2D array detectors for light sheet based fluorescence correlation spectroscopy.	Opt Express. 2013 Apr 8;21(7):8652-68.
Ahrens MB, Keller PJ.	Whole-brain functional imaging at cellular resolution using light-sheet microscopy.	Nat Methods. 2013 Mar 18. doi: 10.1038/nmeth.2434.
Long F, Zeng S, Huang ZL.	Localization-based super-resolution microscopy with an sCMOS camera part II: experimentalmethodology for comparing sCMOS with EMCCD cameras.	Opt Express. 2012 Jul 30;20(16):17741-59.
Baumgart E, Kubitscheck U.	Scanned light sheet microscopy with confocal slit detection.	Opt Express. 2012 Sep 10;20(19):21805-14.
Takao D, Nemoto T, Abe T, Kiyonari H, Kajiura-Kobayashi H, Shiratori H, Nonaka S.	Asymmetric distribution of dynamic calcium signals in the node of mouse embryo during left-right axis formation.	Dev Biol. 2013 Apr 1;376(1):23-30.
Huang F, Hartwich TM, Rivera-Molina FE, Lin Y, Duim WC, Long JJ, Uchil PD, Myers JR, Baird MA, Mothes W, Davidson MW, Toomre D, Bewersdorf J.	Video-rate nanoscopy using sCMOS camera-specific single-molecule localization algorithms.	Nat Methods. 2013 May 26. doi: 10.1038/nmeth.2488.
Ma H, Kawai H, Toda E, Zeng, S, Huang ZL	Localization-based super-resolution microscopy with an sCMOS camera part III: camera embedded data processing significantly reduces the challenges of massive data handling	Optics Letters, Vol. 38, Issue 11, pp. 1769-1771 (2013)
Baumgart E., Kaminski T.	Scanned LSFM with Confocal Detection.	Imaging and Microscopy, Volume 15, Issue 1 2013.
Xu D, Jiang T, Li A, Hu B, Feng Z, Gong H, Zeng S, Luo Q.	Fast optical sectioning obtained by structured illumination microscopy using a digital mirror device.	J Biomed Opt. 2013 Jun;18(6):60503. doi: 10.1117/1.JBO.18.6.060503.

ソフトウエア

浜松ホトニクスが提供する、画像取得、解析を目的としたアプリケーションソフトウェアおよび当社製カメラ専用のAPIやソフトウエア開発キットです。

仕様

型名	C13440-20CU
撮像素子	科学計測用CMOSイメージセンサ
有効画素数	2048 (H) × 2048 (V)
画素サイズ	6.5 μm × 6.5 μm
有効素子サイズ	13.312 mm × 13.312 mm
飽和電荷量	30 000 electrons（Typ.）
読み出し速度	スタンダードスキャンモード（全画素読み出し時）：100 フレーム/秒（Camera Link）^1 スタンダードスキャンモード（全画素読み出し時）：40 フレーム/秒（USB 3.0、16 bit）^1 スタンダードスキャンモード（全画素読み出し時）：53 フレーム/秒（USB 3.0、12 bit）^1 スタンダードスキャンモード（全画素読み出し時）：80 フレーム/秒（USB 3.0、8 bit）^1
読み出しノイズ	スタンダードスキャンモード（100 フレーム/秒）：1.0 electrons median（Typ.）、1.6 electrons rms（Typ.）スロースキャンモード（30 フレーム/秒）：0.8 electrons median（Typ.）、1.4 electrons rms（Typ.）
露光時間	内部同期時：1 ms～10 s（スタンダードスキャン）^2 内部同期時：3 ms～10 s（スロースキャン）^2 内部同期サブアレイ時：38.96 μs～10 s（スタンダードスキャン）^2 内部同期サブアレイ時：129.99 μs～10 s（スロースキャン）^2 外部トリガ時：1 ms～10 s（スタンダードスキャン）^2 外部トリガ時：3 ms～10 s（スロースキャン）^2
冷却方式	ペルチェ冷却
冷却温度	強制空冷（周囲温度+20 ℃）：-10 ℃ 水冷（水温+20 ℃）：-10 ℃ 水冷（水温+15 ℃）：-30 ℃（Typ.）
暗電流	0.06 electrons/pixel/s（-10 ℃）（Typ.） 0.006 electrons/pixel/s（-30 ℃）（Typ.）
ダイナミックレンジ	37 000:1 （Typ.）^*3
外部トリガモード	ノーマルエリアモード時、 W-VIEW モード時：エッジトリガ、グローバルリセットエッジトリガ、レベルトリガ、グローバルリセットレベルトリガ、読み出し同期トリガ、スタートトリガライトシート読み出しモード時、デュアルライトシート読み出しモード時：エッジトリガ、スタートトリガ
入力コネクタ	SMA、Camera Link I/F
トリガ遅延機能	0 μs ～ 10 s（1 μs ステップ）
トリガ出力	プログラマブルタイミング出力×3系統、グローバル露光タイミング出力、トリガレディ出力
出力コネクタ	SMA
画像改善機能	リアルタイムオフセット補正、リアルタイムゲイン補正（カラム/ピクセル）、リアルタイム欠陥画素補正（白点補正3段階）、画像切出し
インターフェース	Camera Link full configuration Deca mode、USB 3.0
A/Dコンバータ	16 bit、12 bit、8 bit
レンズマウント	Cマウント^*4
電源	AC100 V ～ AC240 V、50 Hz/60 Hz
消費電力	約 120 VA ^*5
動作周囲温度	0 ℃ ～ + 40 ℃
保存周囲温度	－10 ℃ ～ + 50 ℃
動作周囲湿度	30 % ～ 80 %（結露しないこと）
保存周囲湿度	90 ％以下（結露しないこと）

*1 画面中央部を測定した場合
*2 内部同期モードでサブアレイ読み出しモードを使用する場合は、サブアレイサイズ、位置により最小露光時間が変わります。
*3 飽和電荷量と読み出しノイズ（スロースキャンモード、median時）の計算結果です。
*4 Fマウント対応の製品（C13440-20CU01）もございます。詳しくはお問い合わせください。
*5 AC240 V入力時の値。AC100 V入力時は、約70 VAです。